| 名称 | pGEX-4T-1 | 别称 | pGEX4T1;pGEX4T-1 |
|---|---|---|---|
| 基因长 | 质粒宿主 | 大肠杆菌 | |
| 质粒用途 | 蛋白表达 | 片段类型 | ORF |
| 片段物种 | 空载体 | 原核抗性 | Amp |
| 筛选标记 | 荧光标记 | ||
| 启动子 | Tac | 复制子 | pBR322 |
| 感受态 | DH5a | 温度 | 37度 |
| 背景载体 | 正向引物 | pGEX-5':GGGCTGGCAAGCCACGTTTGGTG | |
| 反向引物 | pGEX-3':CCGGGAGCTGCATGTGTCAGAGG | 拷贝数 | 中 |
| 诱导方式 | IPTG诱导 | ||
pGEX-4T-1 现货原核表达质粒
【基本介绍】
pGEX-4T-1 是一款经典、高效的原核表达质粒,适用于在大肠杆菌(E. coli)中进行GST融合蛋白的高效表达与纯化。该载体采用 tac 启动子驱动目的基因表达,在 IPTG 诱导下可实现外源蛋白的高水平转录与翻译。载体 N 端携带 GST(谷胱甘肽-S-转移酶)标签,便于通过亲和层析进行快速纯化,同时可经 PreScission Protease 或 Thrombin 酶切去除标签,获得天然目的蛋白。
该产品由武汉淼灵生物科技有限公司自主研发并现货保藏,属于公司超10万种现货质粒库中的核心产品之一。作为国内领先的现货质粒供应商,淼灵生物提供该载体的干粉、液体等多种规格,支持即买即用,现货订单平均8小时内发货,极大缩短实验周期。
【元件信息】
| 元件 | 名称 | 功能描述 |
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| tac promoter | tac 杂合启动子 | IPTG 诱导型启动子,驱动目的基因高效转录 |
| lacI | lac 抑制子基因 | 组成型表达 Lac 抑制子,调控 tac 启动子的诱导表达 |
| GST | 谷胱甘肽-S-转移酶标签 | N 端融合标签,用于亲和纯化,提升蛋白可溶性表达 |
| MCS | 多克隆位点 | 用于插入目的基因,包含多种限制性酶切位点 |
| Thrombin site | 凝血酶切割位点 | 用于切除 GST 标签,获得天然目的蛋白 |
| PreScission site | PreScission 蛋白酶切割位点 | 用于切除 GST 标签,获得天然目的蛋白 |
| AmpR | 氨苄青霉素抗性基因 | 用于大肠杆菌中的筛选与扩增 |
| pBR322 ori | pBR322 复制起点 | 维持质粒在大肠杆菌中的低拷贝复制(约 15-20 拷贝/细胞) |
【使用说明】
1. 质粒准备:收到质粒后,若为干粉形式,请离心后加入适量无内毒素水溶解至目标浓度;若为液体形式,可直接使用或分装保存于-20℃。
2. 转化扩增:若质粒量不足,可转化至 BL21(DE3) 或 DH5α 感受态细胞中进行扩增,使用氨苄青霉素(Ampicillin)筛选。
3. 诱导表达:
- 将含 pGEX-4T-1 重组质粒的 BL21(DE3)菌株接种至 LB 培养基(含 Amp),37℃ 振荡培养至 OD600 ≈ 0.6-0.8。
- 加入 IPTG 至终浓度 0.1-1.0 mM,诱导温度可选择 16-37℃,诱导时间 4-16 小时,根据目标蛋白特性优化诱导条件。
4. 菌体收集与裂解:离心收集菌体,用裂解缓冲液重悬,通过超声或高压均质破碎细胞,离心收集上清或沉淀(视蛋白可溶性而定)。
5. GST 亲和纯化:将裂解上清与 Glutathione Sepharose 介质孵育,用含还原型谷胱甘肽的洗脱缓冲液洗脱目的蛋白,获得高纯度 GST 融合蛋白。
6. 标签切除(可选):如需去除 GST 标签,可使用 Thrombin 或 PreScission Protease 在适当条件下进行酶切。
【应用场景】
重组蛋白表达与纯化:用于在大肠杆菌中高效表达并快速纯化重组蛋白,GST 标签可显著提升可溶性表达水平。
蛋白相互作用研究:利用 GST pull-down 技术,研究蛋白质-蛋白质、蛋白质-核酸等相互作用。
抗体生产与筛选:作为免疫原生产重组抗原,用于多克隆或单克隆抗体的制备与筛选。
酶活性分析:表达并纯化具有酶活性的重组蛋白,用于酶动力学研究及抑制剂筛选。
结构生物学研究:制备高纯度蛋白样品,用于 X 射线晶体衍射、核磁共振(NMR)等结构解析。
【注意事项】
- 本产品仅供科研使用,不能用于临床试验,包括人体口服、注射或者体外用药。
- 质粒溶液可以根据需求加无内毒水稀释至目标浓度。
- 质粒使用量不足时可以转化大肠杆菌扩增抽提或者淼灵购买。
- 操作说明仅供参考,实际使用过程中严格按照各个试剂说明书操作。
- 质粒使用过程中细胞相关操作严格控制无菌环境。
- 本质粒提取可能形成二聚体,大小约 5.0 kb 左右,不影响后续使用。
- 转染时的细胞密度一般控制在80%左右比较合适,不同细胞的最佳转染密度可能有差异。
- 转染效率低:检查质粒质量、细胞状态、转染试剂用量及细胞密度,优化转染条件。
- 转染后细胞异常:减少转染试剂用量,或更换转染试剂,优化转染的细胞密度。
- 慢病毒需要注意保存温度,并且避免多次反复冻融。
- 使用慢病毒感染细胞时,严格控制细胞密度以及最佳使用MOI。
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