| 名称 | pET-32a | 别称 | pET32a |
|---|---|---|---|
| 基因长 | 质粒宿主 | 大肠杆菌 | |
| 质粒用途 | 基因表达 | 片段类型 | ORF |
| 片段物种 | 空载体 | 原核抗性 | Amp |
| 筛选标记 | 荧光标记 | ||
| 启动子 | T7 | 复制子 | pBR322 |
| 感受态 | DH5a | 温度 | 37度 |
| 背景载体 | 正向引物 | T7:TAATACGACTCACTATAGGG | |
| 反向引物 | T7ter:TGCTAGTTATTGCTCAGCGG | 拷贝数 | 低 |
| 诱导方式 | IPTG诱导 | ||
pET-32a 现货原核表达质粒
【基本介绍】
pET-32a 是一款经典、高效的原核表达质粒,广泛应用于大肠杆菌系统中的重组蛋白表达。该载体采用强大的 T7 启动子,在 IPTG 诱导下可实现外源基因的高水平表达。pET-32a 携带 Trx·Tag(硫氧还蛋白标签),可显著提高目标蛋白的可溶性表达水平,减少包涵体形成,同时融合 His·Tag(6×His 标签),便于通过镍柱亲和层析进行一步纯化。
该产品由武汉淼灵生物科技有限公司现货保藏,属于公司超10万种现货质粒库中的原核表达系列核心产品。作为国内领先的现货质粒供应商,淼灵生物提供该载体的干粉、液体等多种规格,支持即买即用,现货订单平均8小时内发货,助力科研人员快速启动蛋白表达实验。
【元件信息】
| 元件 | 名称 | 功能描述 |
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| T7 promoter | T7 噬菌体启动子 | 驱动外源基因高效转录,需 T7 RNA 聚合酶 |
| lac operator | 乳糖操纵子 | 与 lacI 阻遏蛋白结合,实现 IPTG 诱导调控 |
| Trx·Tag | 硫氧还蛋白标签 | 促进目标蛋白可溶性表达,减少包涵体形成 |
| His·Tag(6×His) | 组氨酸标签 | 用于镍柱亲和纯化,便于快速获取纯化蛋白 |
| S·Tag | S 标签 | 用于蛋白检测与纯化的辅助标签 |
| multiple cloning site(MCS) | 多克隆位点 | 用于插入目标基因,提供多种限制性酶切位点 |
| T7 terminator | T7 转录终止子 | 确保转录终止,提高表达稳定性 |
| lacI | 乳糖阻遏蛋白编码基因 | 维持 lac operator 的阻遏状态,实现诱导调控 |
| AmpR | 氨苄青霉素抗性基因 | 用于大肠杆菌中的筛选与扩增 |
| pBR322 ori | pBR322 复制起点 | 维持质粒在大肠杆菌中的低拷贝复制,提高稳定性 |
【使用说明】
1. 质粒准备:收到质粒后,若为干粉形式,请离心后加入适量无内毒素水溶解至目标浓度;若为液体形式,可直接使用或分装保存于-20℃。
2. 转化扩增:将质粒转化至表达宿主菌(如 BL21(DE3)、Rosetta(DE3) 等)中进行扩增与表达,使用氨苄青霉素(Ampicillin,100 μg/mL)筛选。
3. 诱导表达:挑取单克隆接种至 LB 液体培养基(含 Amp),37℃ 振荡培养至 OD600 约 0.6-0.8,加入 IPTG 至终浓度 0.1-1 mM,诱导表达 2-6 小时(可根据蛋白特性优化诱导温度与时间)。
4. 样品收集与裂解:诱导结束后离心收集菌体,使用裂解缓冲液重悬,通过超声或高压均质破碎细胞,离心分离上清与沉淀,分析目标蛋白的可溶性。
5. 蛋白纯化:利用 His·Tag 与镍柱结合,通过亲和层析纯化目标蛋白,可使用不同浓度的咪唑进行洗脱,获得高纯度蛋白。
【应用场景】
重组蛋白表达与纯化:利用 Trx·Tag 提高可溶性表达水平,结合 His·Tag 一步亲和纯化,快速获取高纯度重组蛋白,适用于酶学、结构生物学、抗体生产等领域。
蛋白功能研究:通过表达纯化目标蛋白,开展酶活性分析、蛋白相互作用、药物筛选等研究。
抗原制备:用于生产重组蛋白抗原,支持单克隆抗体、多克隆抗体的制备与筛选。
融合蛋白表达:借助 Trx·Tag 和 His·Tag,表达具有特定功能的融合蛋白,便于后续检测与纯化。
表达条件优化:通过调整 IPTG 浓度、诱导温度与时间,优化难表达蛋白的可溶性及产量。
【注意事项】
- 本产品仅供科研使用,不能用于临床试验,包括人体口服、注射或者体外用药。
- 质粒溶液可以根据需求加无内毒水稀释至目标浓度。
- 质粒使用量不足时可以转化大肠杆菌扩增抽提或者淼灵购买。
- 操作说明仅供参考,实际使用过程中严格按照各个试剂说明书操作。
- 质粒使用过程中细胞相关操作严格控制无菌环境。
- 本质粒提取可能形成二聚体,大小约 5.9 kb 左右,不影响后续使用。
- 转染时的细胞密度一般控制在80%左右比较合适,不同细胞的最佳转染密度可能有差异。
- 转染效率低:检查质粒质量、细胞状态、转染试剂用量及细胞密度,优化转染条件。
- 转染后细胞异常:减少转染试剂用量,或更换转染试剂,优化转染的细胞密度。
- 慢病毒需要注意保存温度,并且避免多次反复冻融。
- 使用慢病毒感染细胞时,严格控制细胞密度以及最佳使用MOI。
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